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Ordering information
Name
Cat. No.
Vol.
Scheme
G-ProA
PMG013-2
2 ml
G-ProG
PMG014-2
G-ProA/G
PMG029-2
G-ProL
PMG030-2
1. 概述
PuriMag? Beads通過親和作用提供了一種快速方便地磁分離抗體的方法。共價連接到封閉磁珠表面的重組蛋白A、蛋白G、蛋白L可以結合來自許多不同物種的抗體，使得能夠從粗提取物中純化抗體。用蛋白A、蛋白G、蛋白L包被的磁珠進行的免疫沉淀測定，背景低，靶抗原的產率高。使用交聯劑化學，您可以將抗體固定在磁性顆粒上，并防止IP或Co-IP實驗中的IgG污染。蛋白A、蛋白G、蛋白L磁珠通常用于從血清，細胞培養上清液或腹水中分離抗體，并用于免疫沉淀和細胞或組織提取物中抗原的免疫共沉淀。與阻斷的磁珠表面共價連接的重組蛋白L通過κ輕鏈選擇性結合小鼠和人抗體。由于蛋白L不結合牛IgG，珠通常用于純化補充有牛血清的細胞培養上清液中的單克隆抗體。為了純化抗體，將磁珠與抗體溶液一起溫育，然后從上清液中磁分離。為了進行免疫沉淀，將珠子加入到已加入抗體的含抗原樣品中并允許孵育以形成抗體 - 抗原復合物。使用洗脫緩沖液將結合的抗體或抗原從珠上解離。用磁力架或自動化儀器將目標純化物溶液從移出。
PuriMag? G-ProA磁珠含有每個蛋白質具有5個Fc結合結構域的重組蛋白A（分子量44.7kDa，通過SDS-PAGE約47kDa的表觀分子量）。這些結構域可以結合來自許多不同物種的抗體，包括小鼠、人、兔、豬、狗和貓。當使用復雜的生物樣品時，磁珠上專有的封閉劑可最大限度地減少或消除磁珠表面的非特異性結合。
PuriMag G-ProG磁珠含有每個蛋白具有2個Fc結合結構域的重組蛋白G（分子量21.6kDa;通過SDS-PAGE約32kDa的表觀分子量）。這些結構域可以結合來自許多不同物種的抗體，包括小鼠，人，兔，牛，山羊和綿羊。已經從重組蛋白G中消除了白蛋白和細胞表面結合結構域以減少非特異性結合。另外，當使用復雜的生物樣品時，磁珠上專有的封閉劑可以最小化或消除珠粒表面上的非特異性結合。為獲得最佳結果提供了詳細說明和優化的緩沖區組件。
PuriMag? G-ProA/G是PuriMag? G-ProA和PuriMag? G-ProG按1:1混合所得，兼有兩者的性質。
PuriMag G-ProL磁珠含有重組蛋白L（分子量35.8kDa，通過SDS-PAGE約36kDa的表觀分子量），每個蛋白質具有4個免疫球蛋白結合結構域。這些結構域可通過κ輕鏈與蛋白A或蛋白G（包括IgG，IgM，IgA，IgE和IgD）結合至更寬范圍的Ig類別。蛋白L還結合單鏈可變片段（scFv）和含有κ輕鏈的Fab片段。當使用復雜的生物樣品時，磁珠上專有的封閉劑可最大限度地減少或消除珠粒表面上的非特異性結合。
PuriMag G-Pro的特點:
l 高效率 – 與其它供應商的磁珠相當或更高的IP 靶抗原產量；
l 非特異性結合 – 穩定的預封閉磁珠可提供高度純化的產物（例如，用抗體在 IP 中洗脫的抗原不含來自復雜細胞裂解物的污染蛋白）；
l 一致性 – 磁珠可消除樹脂損失，與僅使用離心的傳統 IP 方法相比，可實現更有效的分離；
l 用途廣泛 – 多功能珠兼容手動和自動化工作流程。
2. 產品信息
Product Specifications
Description
Polymer coated Fe3O4 nanoparticles
Particle Size
200 nm
Number of Beads
~1.7×1010 beads/mg
Matrix
Proprietary polymer
Functional group
ProA, ProG, ProL group
Binding capacity
>60 μg rabit IgG / mg Beads
Magnetization
60~70 EMU/g
Formulation
10mg/mL in DI water, 0.05% NaN3，0.01% Tween 20，0.05% BSA
Storage
1 year at 2~8 ℃. Do not freeze.
3. 使用方法
3.1 注意事項
? 請勿離心、干燥或冷凍 PuriMag G-ProA 珠子。離心、干燥或冷凍會導致微珠聚集并失去結合活性。為確保磁珠的良好分散以實現最佳抗體結合，重要的是在結合緩沖液中加入 0.025% 至 0.1% 的非離子（例如吐溫-20 去污劑）或兩性離子（例如 CHAPS）去污劑，并在孵育過程中混合磁珠。
? 為了最大限度地減少蛋白質降解，在制備細胞裂解物時加入蛋白酶抑制劑。
? 低pH洗脫可用于一次性應用。低pH洗脫的最佳時間為10分鐘;超過 10 分鐘可能導致非特異性結合和產量降低。
? 在下游蛋白質印跡應用中使用兔抗體（一抗或二抗）時，在室溫下在SDS-PAGE樣品緩沖液中進行洗脫。對于所有其他抗體種類，在SDS-PAGE樣品緩沖液中煮沸微珠對于一次性應用是可以接受的。
注意：煮沸磁珠會導致磁珠聚集和失去結合活性。
? PuriMag G-ProA 微球與小規?？贵w純化和免疫沉淀以及蛋白質印跡分析兼容。
? 在從不同來源血清中分離多克隆 IgG 時，請選擇合適的蛋白磁珠。
3.2 純化抗體流程
A. 緩沖液
? Binding/Wash Buffer: Tris-buffered saline (50 mM Tris, 150 mM NaCl,Adjust pH with HCl to pH 7.6) containing 0.05% Tween-20
? Elution Buffer: IgG elution buffer or 0.1M glycine, pH 2.0
? Neutralization Buffer: High-ionic strength alkaline buffer such as a 1M phosphate or 1M Tris; pH 7.5-9
B. 純化抗體（from Serum, Cell Culture Supernatant or Ascites）
注意：為確保均勻性，請在使用前通過反復倒置、輕輕渦旋或使用旋轉平臺徹底混合珠子。
1. 將 50μL （0.50mg） PuriMag G-ProA 微珠放入 1.5mL 微量離心管中。向珠子中加入 150μL 結合/洗滌緩沖液，輕輕渦旋混合。
2. 將試管放入磁性支架中，將珠子收集在試管側面。取出并丟棄上清液。
3. 向試管中加入 1mL 結合/洗滌緩沖液。將試管倒置數次或輕輕渦旋混合 1 分鐘。用磁架收集珠子，然后取出并丟棄上清液。
4. 用 490μL 結合/洗滌緩沖液稀釋 10μL 樣品。
注意：樣品體積可根據用戶喜好進行修改。如果樣品體積< 500μL，則用結合/洗滌緩沖液將其稀釋至最終體積 500μL。
5.將稀釋后的樣品加入裝有預洗磁珠的試管中，輕輕渦旋或倒置混合。
6. 將樣品在室溫下孵育，混合 1 小時。
7.用磁性支架收集珠子，然后取出并棄去上清液。
8. 向試管中加入 500μL 結合/洗滌緩沖液，充分混合，用磁架收集珠子并棄去上清液。重復此洗滌兩次。
9. 向試管中加入 100μL 洗脫緩沖液，充分混合并在室溫下孵育 10 分鐘，偶爾混合。
10.用磁架收集磁珠，然后保存含有洗脫抗體的上清液。要中和低pH值，每100μL洗脫液加入15μL中和緩沖液。
注意：推薦用于抗體純化的磁珠最小體積為 50μL。
3.3 免疫共沉淀流程
? Binding Buffer: Buffer used to prepare antigen sample
? Wash Buffer: Tris-buffered saline (50 mM Tris, 150 mM NaCl, adjust pH with HCl to pH 7.6) containing 0.05% Tween-20
? Neutralization Buffer: 1M Tris, pH 8.5
B. 免疫沉淀
注意：本實驗方案是免疫沉淀的一般指南，每種應用都需要進行優化。
1. 將抗原樣本與 5 - 10μg 的抗體混合。用細胞裂解緩沖液將反應體積調整至 500μL。在室溫下混合孵育反應 1 - 2 小時，或在 4℃下過夜孵育。
2. 將 25μL（0.25mg）的 Pierce 蛋白 A 磁珠放入 1.5mL 微量離心管中。
3. 向磁珠中加入 175μL 洗滌緩沖液，輕輕渦旋混合。
4. 將離心管放入磁力架中，使磁珠聚集在管的一側。移除并丟棄上清液。
5. 向管中加入 1mL 洗滌緩沖液。將管顛倒幾次或輕輕渦旋混合 1 分鐘。用磁力架收集磁珠。移除并丟棄上清液。
6. 將抗原樣本 / 抗體混合物加入含有預洗磁珠的 1.5mL 微量離心管中，并在室溫下混合孵育 1 小時。
7. 用磁力架收集磁珠，然后移除流出液并保存用于分析。
8. 向管中加入 500μL 洗滌緩沖液并輕輕混合。收集磁珠并丟棄上清液。重復洗滌兩次。
9. 向管中加入 500μL 超純水并輕輕混合。用磁力架收集磁珠并丟棄上清液。
磁珠客戶發表的相關論文：
1. Chen Xiao-Li, et al. Direct Blood Culturing of Candida spp. on Solid Medium by a Rapid Enrichment Method with Magnetic Beads Coated with Recombinant Human Mannan-Binding Lectin, Journal of Clinical Microbiology, Volume 58, Issue 4, 2020, DOI: https://doi.org/10.1128/jcm.00057-20 （Homo-strep和蛋白A磁珠偶聯抗體）
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