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1、1M Tris-HCl            □組份濃度1 MTris-HCl
（pH7.4，7.6，8.0）   □配制量1L
    □配置方法 1. 稱量121.1gTris置于1L燒杯中。
                         2. 加入約800mL的去離子水，充分攪拌溶解。
                         3. 按下表量加入濃鹽酸調節所需要的pH值。
                                                        pH值                      濃HCl 
                                                        7.4                         約70mL
                                                        7.6                         約60mL
                                                        8.0                         約42mL
                        4. 將溶解定容至1L。 
                       5. 高溫高壓滅菌后，室溫保存。                           

注意：應使溶液冷卻至室溫后再調定pH值，因為Tris溶液的pH值隨溫度的變化差很大，溫度每升高1℃，溶液的pH值大約降低0.03個單位。 

2、1.5 MTris-HCl    □組份濃度1.5 MTris-HCl
    （pH8.8）            □配制量1L
        □配置方法 1.稱取181.7gTris置于1L燒杯中。
                           2. 加入約800mL的去離子水，充分攪拌溶解。
                           3. 用濃鹽酸調pH值至8.8。
                            4. 將溶液定容至1L。
                          5. 高溫高壓滅菌后，室溫保存。 
       注意：應使溶液冷卻至室溫后再調定pH值，因為Tris溶液的pH值隨溫度的變化差異很大，溫度每升高1℃，溶液的pH值大約降低0.03個單位。 

3、10×TE Buffer        □組份濃度100 mMTris-HCl，10 mMEDTA
（pH 7.4，7.6，8.0）  □配制量1L
 □配置方法 1. 量取下列溶液，置于1L燒杯中。
                              1 MTris-HCl Buffer（pH7.4，7.6，8.0） 100mL
                            500 mMEDTA（pH8.0） 20mL
                      2. 向燒杯中加入約800mL的去離子水，均勻混合。
                     3. 將溶液定至1L后，高溫高壓滅菌。
                     4. 室溫保存。 

4、3 M 醋酸鈉     □組份濃度3 M醋酸鈉
    （pH5.2）          □配制量 100mL
    □配置方法 1. 稱取40.8gNaOAc?3H2O置于100～200mL燒杯中，加入約40mL的去離子水攪拌溶解。
                          2. 加入冰乙酸調節pH值至5.2。
                        3. 加入去離子水將溶液定容至100mL。
                         4. 高溫高壓滅菌后，室溫保存。 

5、PBS Buffer          □組份濃度137 mMNaCl，2.7mMKCl，10 mMNa2HPO4，2 mMKH2PO4
                                □配制量1L

□配置方法 1. 稱量下列試劑，置于1L燒杯中。
                                                      NaCl                     8 g
                                                      KCl                     0.2g
                                                      Na2HPO4          1.42 g
                                                      KH2PO4             0.27g
       2. 向燒杯中加入約800 mL的去離子水，充分攪拌溶解。
      3. 滴加HCl將pH值調節至7.4，然后加入去離子水將溶液定容至1L。 
       4. 高溫高壓滅菌后，室溫保存。
       注意：上述PBS Buffer中無二價陽離子，如需要，可在配方中補充1mMCaCl2和0.5 mMMgCl2。 

6、10 M醋酸銨         □組份濃度10 M醋酸銨
                                □配制量 100mL
   □配置方法 1. 稱量77.1g醋酸銨置于100～200 mL燒杯中，加入約30 mL的去離子水攪拌溶解。
                        2.加去離子水將溶液定容至100mL。
                          3.使用0.22μm濾膜過濾除菌。
                         4.密封瓶口于室溫保存。 
       注意：醋酸銨受熱易分解，所以不能高溫高壓滅菌。 

7、Tris- HCl平衡苯酚    □配置方法

       1. 使用原料：大多數市售液化苯酚是清亮無色的，無需重蒸餾便可用于分子生物學實驗。但有些液化苯酚呈粉紅色或黃色，應避免使用。同時也應避免使用結晶苯酚，結晶苯酚必須在160℃對其進行重蒸餾除去諸如醌等氧化產物，這些氧化產物可引起磷酸二酯鍵的斷裂或導致RNA和DNA的交聯等。因此，苯酚的質量對DNA、RNA的提取極為重要，我們推薦使用高質量的苯酚進行分子生物學實驗。  
       2. 操作注意：苯酚腐蝕性極強，并可引起嚴重灼傷，操作時應戴手套及防護鏡等。所有操作均應在通風櫥中進行，與苯酚接觸過的皮膚部位應用大量水清洗，并用肥皂和水洗滌，忌用乙醇。 
       3. 苯酚平衡：因為在酸性pH條件下DNA分配于有機相，因此使用苯酚前必須對苯酚進行平衡使其pH值達到7.8以上，苯酚平衡操作方法如下： 
          ① 液化苯酚應貯存于-20℃，此時的苯酚呈現結晶狀態。從冰柜中取出的苯酚首先在室溫下放置使其達到室溫，然后在68℃水浴中使苯酚充分溶解。 
          ② 加入羥基喹啉（8-Quinolinol）至終濃度0.1％。該化合物是一種還原劑、RNA酶的不完全抑制劑及金屬離子的弱螯合劑，同時因其呈黃色。有助于方便識別有機相。 
          ③ 加入等體積的1MTris-HCl（pH8.0），使用磁力攪拌器攪拌15分鐘，靜置使其充分分層后，除去上層水相。  
          ④ 重復操作步驟③。 
          ⑤ 加入等體積的0.1MTris-HCl（pH8.0），使用磁力攪拌器攪拌15分鐘，靜置使其充分分層后，除去上層水相。  
          ⑥ 重復操作步驟⑤，稍微殘留部分上層水相。 
          ⑦ 使用pH試紙確認有機相的pH值大于7.8。 
          ⑧ 將苯酚置于棕色玻璃瓶中4℃避光保存。

8、苯酚/氯仿/異戊醇  □配置方法

        1. 說明：從核酸樣品中除去蛋白質時常常使用苯/酚/氯仿/異戊醇（25：24：1）。氯仿可使蛋白（25 ：24 ：1） 質變性并有助于液相與有機相的分離，而異戊醇則有助于消除抽提過程中出現的氣泡。 
        2. 配置方法：將Tris-HCl平衡苯酚與等體積的氯仿/異戊醇（24：1）均勻混合后，移入棕色玻璃瓶中4℃保存。 

9、10％（W/V）SDS   □組份濃度 10％（W/V）SDS
                                   □配制量 100mL
    □配置方法 1.稱量10g高純度的SDS置于100～200mL燒杯中，加入約80mL的去離子水，68℃加熱溶解。
                        2. 滴加數滴濃鹽酸調節pH值至7.2。
                           3. 將溶液定容至100mL后，室溫保存。 

10、2 N NaOH           □組份濃度 2N NaOH
                                 □配制量 100mL 
    □配置方法

1.量取80mL去離子水置于100～200mL塑料燒杯中（NaOH溶解過程中大量放熱，有可能使玻璃燒杯炸裂）。 
      2. 稱取8gNaOH小心地逐漸加入到燒杯中，邊加邊攪拌。
     3. 待NaOH完全溶解后，用去離子水將溶液體積定容至100mL。
     4. 將溶液轉移至塑料容器中后，室溫保存。 

11、2.5 N HCl         □組份濃度 2.5 N HCl
                                  □配制量 100mL
    □配置方法 1. 在78.4mL的去離子水中加入21.6mL的濃鹽酸（11.6N），均勻混合。
                        2. 室溫保存。 

12、5 M NaCl         □組份濃度5 MNaCl
                                 □配制量1L
  □配置方法 1. 稱取292.2gNaCl置于1L燒杯中，加入約800mL的去離子水后攪拌溶解。
                    2. 加去離子水將溶液定容至1L后，適量分成小份。
                    3. 高溫高壓滅菌后，4℃保存。 

13、20％（W/V）Glucose     □組份濃度 20％（W/V）Glucose 
                                             □配制量 100mL 
 □配置方法 1. 稱取20gGlucose置于100～200mL燒杯中，加入約80mL的去離子水后，攪拌溶解。
                    2. 加去離子水將溶液定容至100mL。
                     3. 高溫高壓滅菌后，4℃保存。 

14、Solution I            □組份濃度25 mMTris-HCl（pH8.0），10mMEDTA，50mMGlucose
（質粒提取用）        □配制量1L
    □配置方法 1. 量取下列溶液，置于1L燒杯中。
            1MTris-HCl（pH8.0）             25mL
                           0.5 MEDTA（pH8.0）            20mL 
                           20％Glucose（1.11M）           45mL
                              dH2O                                    910mL
                          2. 高溫高壓滅菌后，4℃保存。
                          3. 使用前每50 mL的Soliution I中加入2mL的RNase A（20mg/mL）。 

15、Solution II           □組份濃度250mMNaOH，1％（W/V）SDS
（質粒提取用）            □配制量 500mL
   □配置方法 1. 量取下列溶液置于500mL燒杯中。
                                                        10％SDS                        50mL
                                                         2N NaOH                       50mL 
                      2. 加滅菌水定容至500mL，充分混勻。
                      3. 室溫保存。此溶液保存時間最好不要超過一個月。 
                        注意：SDS易產生氣泡，不要劇烈攪拌。

16、Solution III          □組份濃度3MKOAc，5MCH3COOH
（質粒提取用）           □配制量 500mL
 □配置方法 1. 量取下列溶液置于500mL燒杯中。
                                                        KOAc                           147g
                                                        CH3COOH                    57.5mL 
                      2. 加入300mL去離子水后攪拌溶解。
                      3. 加去離子水將溶液定容至500mL。 
                       4. 高溫高壓滅菌后，4℃保存。 

17、0.5M EDTA            □組份濃度0.5 MEDTA
       (pH8.0)                  □配制量1L
     □配置方法 1. 稱取186.1gNa2EDTA?2H2O，置于1L燒杯中。
                          2. 加入約800mL的去離子水，充分攪拌。
                          3. 用NaOH調節pH值值8.0（約20gNaOH）。 
                                  注意：pH值至8.0時，EDTA才能完全溶解。
                          4. 加去離子水將溶液定容至1L。
                          5. 適量分成小份后，高溫高壓滅菌。
                           6. 室溫保存。 

18、1 M DTT          □組份濃度1 MDTT
                                  □配制量 20mL
          □配置方法 1. 稱取3.09gDTT，加入到50mL塑料離心管內。
                             2. 加20mL的0.01 M的NaOAc（pH5.2），溶解后使用0.22μm濾器過濾除菌。
                             3. 適量分成小份后，-20℃保存。 

19、10mM ATP            □組份濃度10mMATP
                                    □配制量 20mL
□配置方法 1. 稱取121mg Na2ATP?3H2O，加入到50mL塑料離心管內。
                    2. 加20mL的25mMTris-HCl（pH8.0），攪拌溶解。
                   3. 適量分成小份，-20℃保存。

分子生物學實驗常用培養基的配制方法

1、Ampicillin             □組份濃度 100mg/ml Ampicillin
（100mg/ml）              □配制量 50mL
 □配置方法 1. 稱量5gAmpicillin置于50mL離心管中。
                       2. 加入40mL滅菌水，充分混合溶解后，定容至50mL。
                       3. 用0.22μm濾膜過濾除菌。
                       4. 小份分裝（1mL/份）后，-20℃保存。 

2、IPTG                    □組份濃度 24mg/mL IPTG
（24mg/mL）             □配制量 50mL
     配置方法 1. 稱量1.2gIPTG置于50mL離心管中。
                      2. 加入40mL滅菌水，充分混合溶解后，定容至50mL。
                     3. 用0.22μm濾膜過濾除菌。 
                     4. 小份分裝（1mL/份）后，-20℃保存。 

3、X- Gal                  □組份濃度 20mg/mL X- Gal
（20mg/mL）             □配制量 50mL
          □配置方法 1. 稱取1gX-Gal置于50mL離心管中。
                             2. 加入40mL DMF（二甲基甲酰胺），充分混合溶解后，定容至50mL。
                           3. 小份分裝（1mL/份）后，-20℃保存。 

4、LB培養基              □組份濃度 1％（W/V）Tryptone，0.5％（W/V）Yeast Extract，1％（W/V）NaCl
                                  □配制量1L
       □配置方法 1. 稱量下列試劑，置于1L燒杯中
                                                        Tryptone                          10g
                                                         Yeast Extract                   5g 
                                                         NaCl                              10g
                            2. 加入約800mL的去離子水，充分攪拌溶解。
                           3. 滴加5N NaOH（約0.2mL），調節pH值至7.0。
                            4. 高溫高壓滅菌后，4℃保存。 

5、LB/Amp培養基     □組份濃度  1％（W/V）        Tryptone
                                                     0.5％（W/V）     Yeast Extract
                                                     1％（W/V）        NaCl
                                                     0.1mg/mL            Ampicillin
                                 □配制量1L
        □配置方法 1. 稱量下列試劑，置于1L燒杯中
                                                       Tryptone                     10g
                                                       Yeast Extract                5g
                                                       NaCl                           10g
                              2. 加入約800mL的去離子水，充分攪拌溶解。
                          3. 滴加5N NaOH（約0.2mL），調節pH值至7.0。
                            4. 加去離子水將培養基定容至1L。 
                          5. 高溫高壓滅菌后，冷卻至室溫。
                           6. 加入1mL Ampicillin（100mg/mL）后均勻混合。
                                                    7.4℃保存。 

6、TB培養基             □組份濃度     1.2％（W/V）       Tryptone
                                                       2.4％（W/V）      Yeast Extract
                                                       0.4％（V/V）        Glycerol 
                                                       17mM                   KH2PO4
                                                      72mM                   K2HPO4 
                                  □配制量1L
      □配置方法 1. 配制磷酸鹽緩沖液（0.17MKH2PO4，0.72MK2HPO4）100mL。
                           2.稱取下列試劑，置于1L燒杯中。
                                                       Tryptone                          12g 
                                                       Yeast Extract                    24g
                                                       Glycerol                              4mL 
                   3. 加入約800mL的去離子水，充分攪拌溶解。
                  4. 加去離子水將培養基定容至1L后，高溫高壓滅菌。
                  5. 待溶液冷卻至60℃以下時，加入100mL的上述滅菌磷酸鹽緩沖液。
                 6.4℃保存。 

7、TB/Apm培養基    □組份濃度 1.2％（W/V）    Tryptone 
                                                  2.4％（W/V）    Yeast Extract
                                                  0.4％（V/V）      Glycerol
                                                  17mM                 KH2PO4
                                                 72mM                 K2HPO4
                                                  0.1mg/mL           Ampicillin 
                                 □配制量1L
□配置方法

1. 配制磷酸鹽緩沖液（0.17MKH2PO4，0.72MK2HPO4）100mL。溶解2.31gKH2PO4和2.54gK2HPO4于90mL的去離子水中，攪拌溶解后，加去離子水定容至100mL，高溫高壓滅菌。 
2. 稱取下列試劑，置于1L燒杯中。
                                                      Tryptone                        12g
                                                      Yeast Extract                 24g 
                                                      Glycerol                           4mL
3. 加入約800mL的去離子水，充分攪拌溶解。
4. 加去離子水將培養基定容至1L后，高溫高壓滅菌。

 5. 待溶液冷卻至60℃以下時，加入100mL的上述滅菌磷酸鹽緩沖液和1mL Ampicillin（100mg/mL）。
 6. 均勻混合后4℃保存。 

8、SOB培養基         □組份濃度 2％（W/V）       Tryptone
                                                  0.5％（W/V）    Yeast Extract
                                                  0.05％（W /V） NaCl
                                                 2.5mM               KCl
                                                10mM                 MgCl2 
                                □配制量1L
   □配置方法

1. 配制250mMKCl溶液。 在90mL的去離子水中溶解1.86gKCl后，定容至100mL。
2. 配制2MMgCl2溶液。在90mL的去離子水中溶解19gMgCl2后，定容至100mL，高溫高壓滅菌。

3. 稱取下列試劑，置于1L燒杯中。 
                                                     Tryptone                       20g
                                                     Yeast Extract                 5g
                                                     NaCl                            0.5g
4. 加入約800mL的去離子水，充分攪拌溶解。

5 量取10mL250 mMKCl溶液，加入到燒杯中。 
6. 滴加5N NaOH溶液（約0.2mL），調節pH值至7.0。
7. 加入去離子水將培養基定容至1L。
8. 高溫高壓滅菌后，4℃保存。
    9. 使用前加入5mL滅菌的2MMgCl2溶液。 

9、SOC培養基         □組份濃度    2％（W/V）          Tryptone
                                                    0.5％（W/V）             Yeast Extract
                                                    0.05％（W /V）          NaCl 
                                                    2.5mM                          KCl
                                                   10mM                           MgCl2
                                                   20mM                           葡萄糖
                               □配制量 100mL
 □配置方法

1. 配制1M葡萄糖溶液。將18g葡萄糖溶于90mL去離子水中，充分溶解后定容至100mL，用0.22μm濾膜過濾除菌。
2. 向100mL SOB培養基中加入除菌的1M葡萄糖溶液2mL，均勻混合。

3.4℃保存。 

10、2×YT培養基    □組份濃度 1.6％（W/V）Tryptone， 1％（W/V）Yeast Extract，0.5％（W/V）NaCl
                               □配制量1L
  □配置方法 1.稱取下列試劑，置于1L燒杯中。
                                                    Tryptone                         16g
                                                    Yeast Extract                   10g 
                                                    NaCl                                 5g
                       2. 加入約800mL的去離子水，充分攪拌溶解。
                       3. 滴加1N KOH，調節pH值至7.0。
                       4. .加水離子水將培養基定容至1L。
                       5. 高溫高壓后，4℃保存。 

11、Φb×broth培養基 □組份濃度 2％（W/V）Tryptone， 0.5％（W/V）Yeast Extract，0.5％（W/V）MgSO4?7H2O
                                    □配制量1L 
        □配置方法 1.稱取下列試劑，置于1L燒杯中。
                                                         Tryptone                     20g
                                                         Yeast Extract               5g
                                                         MgSO4?7H2O                5g 
                       2. 加入約800mL的去離子水，充分攪拌溶解。            

3. 滴加1N KOH，調節pH值至7.5。
                        4. .加水離子水將培養基定容至1L。
                       5. 高溫高壓后，4℃保存。 

12、NZCYM培養基  □組份濃度    0.5％（W/V）        Yeast Extract
                                                    0.1％（W/V）        Casamino Acid
                                                   1％（W /V）           NZ胺
                                                   0.5％（W /V）        NaCl 
                                                   0.2％（W /V）        MgSO4?7H2O
                               □配制量1L
           □配置方法 1.稱取下列試劑，置于1L燒杯中。
                                                    Yeast Extract                 5g 
                                                    Casamino Acid               1g
                                                    NZ胺                           10g
                                                    NaCl                             5g
                                                    MgSO4?7H2O                 2g
                    2. 加入約800mL的去離子水，充分攪拌溶解。
                  3. 滴加5N NaOH溶液（約0.2mL），調節pH值至7.0。
                  4. .加水離子水將培養基定容至1L。
                  5. 高溫高壓后，4℃保存。 

13、NZYM培養基      □組份濃度     0.5％（W/V）        Yeast Extract
                                                     1％（W /V）             NZ胺
                                                     0.5％（W /V）           NaCl
                                                     0.2％（W /V）           MgSO4?7H2O 
 □配置方法 NZYM培養基除不含Casamino Acid（酪蛋白氨基酸）外，其他成份與NZCYM培養基相同。 

14、NZM培養基       □組份濃度     1％（W /V）       NZ胺
                                                     0.5％（W /V）           NaCl
                                                     0.2％（W /V）           MgSO4?7H2O
□配置方法 NZM培養基除不含Yeast Extract（酵母提取物）外，其他成份與NZYM培養基相同。 

15、一般固體培養基的  □配置方法 1. 按照液體培養基配方準備好液體培養基，在高溫高壓滅菌前，加入下列試劑中的一種。
       配制            Agar（瓊脂：鋪制平板用）             15g/L
                         Agar（瓊脂：配制頂層瓊脂用）        7g/L
                     Agarose（瓊脂糖：鋪制平板用）    15 g/L
                       Agarose（瓊脂糖：配制頂層瓊脂用）7g/L
                2. 高溫高壓滅菌后，帶上手套取出培養基，搖動容器使瓊脂或瓊脂糖充分混勻（此時培養基溫度很高，小心燙傷）。  
               3. 待培養基冷卻至50～60℃時，加入熱不穩定物質（如抗生素），搖動容器充分混勻。
              4. .鋪制平板（30～35mL培養基/90mm培養皿）。 

16、LB/Amp/X-Gal/IPTG  □組份濃度      1％（W /V）            Tryptone 
       平板培養基                      0.5％（W/V）          Yeast Extract
                                                1％（W/V）              NaCl
                                              0.1mg/mL                 Ampicillin
                                               0.5％（W /V）          IPTG
                                                0.04mg/mL                X-Gal
                                               1.5％（W /V）           Agar
                                       □配制量1L
  □配置方法 1. 稱取下列試劑，置于1L燒杯中。
                                                             Tryptone                       10g 
                                                             Yeast Extract                  5g
                                                              NaCl                           10g
                      2. 加入約800mL的去離子水，充分攪拌溶解。
                     3. 滴加5N NaOH溶液（約0.2mL），調節pH值至7.0。 
                     4. 加水離子水將培養基定容至1L后，加入15gAgar。
                    5. 高溫高壓滅菌后，冷卻至60℃左右。
                    6. 加入1mL Ampicillin（100mg/mL）、1mL IPTG（24mg/mL）、2mL X-Gal（20mg/mL）后均勻混合。 
                   7. 鋪制平板（30～35mL培養基/90mm培養基）。
                   8.4℃保存平板。 

17、TB/Amp/X-Gal/IPTG  □組份濃度   

 1.2％（W /V）             Tryptone
  平板培養基   2.4％（W/V）              Yeast Extract
                          0.4％（W/V）               Glycerol 
                         17mM                           KH2PO4
                       72mM                           K2HPO4
                        0.1mg/mL                     Ampicillin
                           0.024mg/mL                  IPTG 
                         0.04mg/mL                    X-Gal
                        1.5％（W /V）                Agar
   □配制量1L
  □配置方法 1.配制磷酸鹽緩沖液（0.17MKH2PO4，0.72MK2HPO4）100mL。
                       2. 稱取下列試劑，置于1L燒杯中。 
                                                              Tryptone                      12g 
                                                              Yeast Extract             24g
                                                          Glycerol                        4mL
                       3. 加入約800mL的去離子水，充分攪拌溶解。
                       4. 加水離子水將培養基定容至1L后，加入15gAgar。
                        5. 高溫高壓滅菌后，冷卻至60℃左右。
                        6. 加入100mL的上述滅菌磷酸鹽緩沖液、1mL Ampicillin（100mg/mL）、1mL IPTG（24mg/mL）、2mL X-Gal（20mg/mL）后均勻混合。 
                        7. 鋪制平板（30～35mL培養基/90mm培養基）。 
                        8.4℃保存平板。

生物化學實驗常用試劑的配制方法

1、0.5mol/L氫氧化鈉溶液 □組份濃度 0.5mol/L
                                                 □配制量     2L
             □配置方法 1.準確稱取氫氧化鈉40g。
                                   2.用去離子水溶解并稀釋至2L。 

2、0.5mol/L鹽酸溶液          □組份濃度   0.5mol/L
                                                 □配制量      2L
             □配置方法 1.準確量取鹽酸83.4mL。
                                 2.用去離子水稀釋至2L。

4、0.2％葡萄糖標準溶液      □組份濃度 0.2％
                                                  □配制量1L 
   □配置方法 1.稱取葡萄糖2.5g置于稱量瓶中，在70℃干燥2小時。
                       2.干燥器中冷卻至室溫，重復干燥，冷卻至恒重。
                        3.準確稱取葡萄糖2.000g。
                        4.用去離子水溶解并定容至1L 
                        5.于4℃保存。

5、250μg/mL牛血清             □組份濃度 250μg/mL
白蛋白標準液                          □配制量2L 
   □配置方法 1.準確稱取250mg標準牛血清白蛋白。
                         2.用0.03mol/LpH7.8的磷酸緩沖液溶解并定容至1L。
                      3.4℃保存。

6、Folin試劑甲                      

□配置方法 1.稱取10g氫氧化鈉溶于400mL去離子水中，
                                   加入50g無水碳酸鈉，溶解，待用。
                 2.稱取0.5g酒石酸鉀鈉，溶于80mL去離子水中，
                                   加入0.25g硫酸銅?5水，溶解。
                   3.將1：2：去離子水按20：4：1的比例混合即可。
                   4.4℃保存，可用一周。

7、Folin試劑乙                      

□配置方法

1.在500mL的磨口回流裝置內加入鎢酸鈉?2水25.0359g，
          鉬酸鈉?2水6.2526g，去離子水175mL，85％磷酸12.5mL，
          濃鹽酸25mL，充分混合。
 2.回流10小時，再加硫酸鋰37.5g，去離子水12.5mL及數滴溴。
 3.然后開口沸騰15min，以驅除過量的溴，冷卻后定容到250mL。
 4.于棕色瓶中保存，可使用多年 
注意：上述制備地Folin試劑乙地貯備液濃度一般在2mol/L左 右，幾種操作方案都是把Folin試劑乙稀釋至1mol/L的 濃度作為應用液，我們這時是把貯備液于使用前稀釋18 倍，使之濃度為0.1mol/L略高。這種稀釋18倍后的Folin 試劑乙就是上文稱之為的“應用液”。Folin試劑乙貯備  液濃度的標定，一般是以酚酞為指示劑。用Folin試劑乙去滴定1mol/L左右的標準氫氧化鈉溶液，當溶液顏色由紅變為紫灰，再突然變成墨綠即為終點，如果用氫氧化鈉去滴定Folin試劑乙，終點不太好掌握，溶液地顏色是由淺黃變為淺綠，再變為灰紫色為終點。

 8、DNS試劑                           

□配置方法 1.取3，5-二硝基水楊酸10g,加入2mol/L氫氧化鈉溶液200mL。 （3，5-二硝基水楊酸試劑）                      

2.將3，5-二硝基水楊酸溶解，然后加入酒石酸鉀鈉300g。

3. 待其完全溶解，用去離子水稀釋至2000mL，棕色瓶保存。

 9、5％蔗糖溶液                  □組份濃度 5％
                                               □配制量1L
              □配置方法 稱取蔗糖50g，用去離子水溶解定容至1L。

 10、0.1mol/L蔗糖溶液      □組份濃度 0.1mol/L 
                                               □配制量1L
                                               □配置方法 稱取蔗糖34.230g，用去離子水溶解并定容至1L。

11、20％乙酸溶液             □組份濃度 20％
                                              □配制量1.2L
    □配置方法 量取冰乙酸300mL，用去離子水稀釋至1200mL。

 12、30％（W/V）Acrylamide   

□組份濃度 30％（W/V）Acrylamide 0.05％
 □配制量1L
 □配置方法 1.稱量下列試劑，置于1L燒杯中
                                                 Acrylamide  290g 
                                                  BIS                   10g
             2.向燒杯中加入約600mL的去離子水，充分攪拌溶解 
             3.加入去離子水將溶液定容至1L，用0.45μm濾膜濾去雜質。
             4.于棕色瓶中4℃保存。
      注意：丙稀銑胺具有很強的神經毒性，并可通過皮膚吸收，
                其作用有積累性，配制時應戴手套等。聚丙烯酰胺無
                毒，但也應謹慎操作，因為有可能含有少量的未聚合成份。

 13、40％（W/V）Acrylamide    

 □組份濃度 40％（W/V）Acrylamide 0.05％
 □配制量1L
   □配置方法 1.稱量下列試劑，置于1L燒杯中
                                                  Acrylamide    380g
                                                  BIS                    20g
                       2.向燒杯中加入約600mL的去離子水，充分攪拌溶解
                       3.加入去離子水將溶液定容至1L，用0.45μm濾膜濾去雜質。 
                       4.于棕色瓶中4℃保存。
注意：丙稀銑胺具有很強的神經毒性，并可通過皮膚吸收， 其作用有積累性，配制時應戴手套等。聚丙烯酰胺無 毒，但也應謹慎操作，因為有可能含有少量的未聚合成份。

14、10％（W/V）過硫酸銨       

  □組份濃度 10％（W/V）過硫酸銨 
 □配制量      10mL
  □配置方法 1.稱取1g過硫酸銨。
                       2.加入10mL的去離子水后攪拌溶解。
                       3.貯存于4℃。
  注意：10％過硫酸胺溶液在4℃保存時間可使用2周左右，
              超過期限會失去催化作用。

15、考馬斯亮藍R-250染色液

□組份濃度 0.1％（W/V）考馬斯亮藍R-250，25%（V/V）異丙醇，
                                                                            10％（V/V）冰醋酸
                                                      □配制量      1L
      □配置方法 1.稱取1g考馬斯亮藍R-250,置于1L燒杯中。
                           2.量取250mL的異丙醇加入上述燒杯中，攪拌溶解。
                           3.加入100mL的冰乙醋酸，均勻攪拌。
                          4.加入650mL的去離子水，均勻攪拌。
                           5.用濾紙出去顆粒物質后，室溫保存。

16、考馬斯亮藍染色脫色液    

□組份濃度 10％（V/V）醋酸，5％（V/V）乙醇
   □配制量1L
   □配置方法 1.量取下列溶液，置于1L燒杯中。
                                         醋酸     100mL
                                        乙醇        50mL 
                                           dH₂O     850mL
              2.充分混合后使用。

17、凝膠固定液                       

 □組份濃度 50％（V/V）甲醇，10％（V/V）醋酸
(SDS-PAGE銀氨染色用)           □配制量100L

 □配置方法 1.量取下列溶液，置于1L燒杯中。
                                             甲醇   500mL
                                            醋酸 100mL 
                                            dH₂O 400mL
                     2.均勻混合后室溫保存。

18、凝膠處理液                        

□組份濃度 50％（V/V）甲醇，10％（V/V）戊二醛
(SDS-PAGE銀氨染色用)          □配制量1L
 □配置方法 1.量取下列溶液，置于1L燒杯中。
                                           甲醇       50mL
                                            戊二醛   10mL 
                                             dH₂O     40mL
                      2. 均勻混合后室溫保存。

19、凝膠染色液                       

□組份濃度 0.4％（W/V）硝酸銀，1％（V/V）濃氨水，
      (SDS-PAGE銀氨染色用) 0.04％（W/V）氫氧化鈉
                                                     □配制量     100L
 □配置方法 1.量取下列試劑，加入100～200mL試劑瓶中。
                                      20％硝酸銀 2mL
                                              濃氨水 1mL
                                    4％氫氧化鈉 1mL
                                                  dH₂O 96mL 
         2.均勻混合。該溶液應為無色透明狀。如氨水濃度過低時溶液 
            會呈現混濁狀，此時應補加濃氨水，直至透明。
        3.本染色液應現用現配，不宜保存。 

20、顯影液                                

□組份濃度 0.005％（V/V）檸檬酸，0.02％（V/V）甲醛
(SDS-PAGE銀氨染色用)           □配制量1L
                   □配置方法 1.稱取下列試劑，置于1L試劑瓶中。
                                                                                       檸檬酸 50mg
                                                                                           甲醛 0.2mL 
                                      2.加入1L去離子水后，搖動混合后溶解。
                                      3.室溫保存。 

21、45％乙醇溶液                   □組份濃度 45％ 
                                                    □配制量1L 
   □配置方法 量取無水乙醇450mL，加入去離子水550mL，混勻。

22、5％的十二烷基硫酸鈉溶液 □組份濃度 5％
       （W/V）                                   □配制量0.1L

配置方法:稱取5.0g十二烷基硫酸鈉,溶于100mL4％的乙醇溶液中。

23、三氯甲烷-異戊醇混合試劑

配置方法 取500mL三氯甲烷試劑，加入21mL異戊醇試劑，混勻。 

24、1.6％乙醛溶液                     □組份濃度 1.6％
                                                       □配制量0.1L
       □配置方法 取47％乙醛3.4mL，用去離子水定容至100mL。

25、二苯胺試劑                          

□配置方法 1.稱取二苯胺試劑0.8g，溶解于180mL冰乙酸中， 
                     2.再加入8mL高氯酸混勻。
                     3. 臨用前加入0.8mL 1.6％乙醛溶液。 
                    注意：配制完成后試劑應為無色。

26、15％三氯乙酸溶液              □組份濃度 15％ 
                                                       □配制量        2L
  □配置方法 稱取三氯乙酸300g，用去離子水溶解定容至2000mL。 

27、1％谷氨酸溶液                    □組份濃度 1％
                                                       □配制量      0.5L 
         □配置方法 1.稱取5g谷氨酸，先用適量得用去離子水溶解。
                           2. 再用氫氧化鉀溶液中和至中性。
                            3. 最后用去離子水定容至0.5L。

28、1％丙酮酸溶液                    □組份濃度     1％
                                                       □配制量     0.5L
           □配置方法 1.稱取5g丙氨酸，先用適量得用去離子水溶解。 
                                2. 再用氫氧化鉀溶液中和至中性。
                                3. 最后用去離子水定容至0.5L。

29、0.1％的碳酸氫鉀溶液       □組份濃度 0.1％ 
                                                     □配制量     0.5L
           □配置方法 稱取碳酸氫鉀0.5g，用去離子水溶解定容至0.5L。

30、0.05％的碘乙酸溶液       □組份濃度 0.05％
                                                    □配制量0.25L
       □配置方法 稱取0.125g碘乙酸，用去離子水溶解定容至0.25L。

31、Locke氏溶液                    □配制量2L
配置方法 稱取18g氯化鈉,0.84g氯化鉀,48g氯化鈣,0.3g碳酸
                  氫鈉，2g葡萄糖，用去離子水溶解定容至2000mL。

32、0.2mol/L的丁酸溶液      □組份濃度 0.2mol/L
                                                   □配制量1L
         □配置方法 1.量取18mL正丁酸試劑。
                              2.用1mol/L的氫氧化鈉中和。
                              3.再用去離子水定容至1L。

33、0.1mol/L的硫代硫酸鈉溶液 □組份濃度 0.1mol/L
                                                           □配制量     10L 
     □配置方法 稱248.17g硫代硫酸鈉，用去離子水溶解并定至10L。

34、0.1mol/L的碘溶液          □組份濃度 0.1mol/L
                                                   □配制量1L
     □配置方法 1.稱取碘12.7g和碘化鉀25g。
                         2.用去離子水溶解并定容至1L。 
                                 3.用0.1mol/L的硫代硫酸鈉標定。 

35、10％氫氧化鈉溶液           □組份濃度 10％
                                                    □配制量2L
        □配置方法 稱取200g氫氧化鈉，用去離子水溶解并定容至2L。

36、10％鹽酸溶液                  □組份濃度 10％
                                                   □配制量0.2L
        □配置方法 量取濃鹽酸49.3mL，用去離子水定至0.2mL。

37、0.1％標準丙氨酸溶液      □組份濃度 0.1％
                                                    □配制量0.5L
      □配置方法 稱取丙氨酸0.5g，用去離子水溶解并定容至0.5mL。

38、0.1％標準谷氨酸溶液      □組份濃度 0.1％
                                                    □配制量    0.5L 
      □配置方法 稱取谷氨酸0.5g，用去離子水溶解并定容至500mL。

39、0.1％水合茚三酮乙醇溶液 □組份濃度 0.1％
                                                         □配制量         1L 
      □配置方法 稱取1g水合茚三酮試劑，溶于1000mL無水乙醇中。

40、酚溶液                                   

□配置方法 在大燒杯中加入80mL去離子水，再加入300g苯酚，在水 浴中加熱攪拌、混合至苯酚完全溶解。將該溶液倒入盛有200mL去離子水的1000mL分液漏斗內，輕輕振蕩混合，使其成為乳狀液。靜止7～10小時，乳狀液變成兩層透明溶液，下層為被水飽和的酚溶液，放出下層，貯存于棕色瓶中備用。

 
41、0.5％淀粉溶液                      □組份濃度 0.5％
                                                         □配制量    0.1L
        □配置方法 稱取淀粉0.5g，用去離子水溶解定容至0.1L。 

42、對羥基聯苯試劑                   

配置方法 稱取對羥基聯苯1.5g，溶于100mL0.5％氫氧化鈉溶液中，
                配制成1.5％的溶液。若對羥基聯苯顏色較深，應用丙酮

或 無水乙醇重結晶，放置時間較長后，會出項針狀結晶，應搖勻后使用。

生物化學實驗常用緩沖液的配制方法
1、0.2 mol/L 磷酸緩沖液      □組份濃度 0.2mol/L
     （pH 6.0）                           □配制量1L 
            □配置方法 1. 稱取磷酸氫二鈉?12水8.82 g。
                                2. 稱取磷酸二氫鈉?2水27.34g。
                               3. 用去離子水溶解并定容至1L。室溫保存。
                     注意：此為母液，使用時稀釋40倍使用。

2、洗脫液                                 □組份濃度 0.15mol/L
     （含0.15mol/L氯                □配制量      10L
     化鈉的0.005mol/L              □配置方法 1.稱取氯化鈉87.66g。
     pH 6.0的磷酸緩沖液）                         2. 用0.2mol/L pH6.0的

磷酸緩沖液250mL溶解。
                                              3. 用去離子水稀釋至10 L。室溫保存。  

3、0.3mol/L磷酸緩沖液        □組份濃度 0.3mol/L
      （pH7.8）                           □配制量      0.5L
                           □配置方法 1.準確稱取磷酸氫二鈉?12水49.150g。
                                                2.磷酸二氫鈉?2水2.000g。
                                    3. 用去離子水溶解并定容至0.5L。室溫保存。
                         注意：此為母液，使用時稀釋10倍使用。

4、0.2mol/L乙酸緩沖液        □組份濃度 0.2mol/L
      （pH4.6）                           □配制量       2L 
                    □配置方法 1.準確稱取乙酸鈉?3水54.44g。
                                        2. 加入23mL冰乙酸，溶解。
                                         3. 用去離子水溶解并定容至2L。4℃保存。

5、0.2mol/L磷酸-檸檬酸      □組份濃度 0.2mol/L
       緩沖液                                □配制量     各1L
     （pH 2.6、4.6、6.6）       

□配置方法  1. 母液A（0.2mol/L的Na₂HPO₄溶液）：稱取Na₂HPO₄?12水143.256g， 用去離子水定容至2L。
                      2. 母液B（0.1mol/L的檸檬酸溶液）：稱取檸檬酸?1水42.028g 用去離子水溶解定容至2L。 
                       3. pH2.6、4.6、6.6的三種緩沖液如下表配制： 
                           pH值 A（mL） B（mL） 
                           2.6     109.0        891.0 
                           4.6      467.5       532.5 
                            6.6       727.5      272.5 
                       4. 按上表混勻后，4℃保存。

6、20×SSC 緩沖液                 □配制量      1L
      （pH7.0）                          □配置方法 1.準確稱取175.2g氯化鈉。
                                                  2.準確稱取88.2g檸檬酸鈉?2水。
                                                 3.溶解于800mL去離子水中。
                           4.加入數滴10mol/L氫氧化鈉溶液調節pH值至7.0。
                                               5.加去離子水定容至1L。 
                      注意：按實驗需要可分裝后高壓滅菌。
        10×SSC、5×SSC、1×SSC可由20×SSC做相應稀釋得到。 

7、0.15mol/L氯化鈉-                 □組份濃度    0.15mol/L
      乙二胺四乙酸二鈉                □配制量      1L
      緩沖液                  □配置方法   1.準確稱取氯化鈉8.77g。
     （pH8.0）                                     2. 稱取乙二胺四乙酸二鈉37.2g。
                                                          3. 溶于800mL去離子水中。
                                                    4.用固體的氫氧化鈉調pH值為8.0。 
                                                   5.加去離子水定容至1L。 

8、1/15mol/L的磷酸鹽              □組份濃度 0.15mol/L
       緩沖液                                     □配制量     1L
      （pH7.6）                              

  □配置方法

1.溶液甲（1/15mol/L的KH₂PO₄溶液）：稱取KH₂PO₄ 9.078g，用去離子水溶解定容至1L。 
 2. 溶液乙(1/15mol/L的Na₂HPO₄溶液):稱取Na₂HPO₄? 2水11.876g（或磷酸氫二鈉?12水23.894g）用去離子水溶解定容至1L。
 3.pH7.6磷酸鹽緩沖液：將①和②按1.4：8.6比例混合即可。

9、5×Tris-GlycineBuffer         □組份濃度0.125MTris，1.25MGlycine，0.5％（w/v）SDS
（SDS-PAGE電泳緩沖液）      □配制量       1L 
  □配置方法 1.稱取下列試劑，置于1L燒杯中。
                                                                                   Tris          15.1g
                                                                                   Glycine       94g
                                                                                   SDS           5.0g
                       2.加入約800mL的去離子水，攪拌溶解。
                       3.加去離子水將溶液定容至1L后，室溫保存。 

10、5×SDS-PAGE                  □組份濃度250mMTris-HCl（pH6.8）
        Loading Buffer                                    10％（W/V） SDS 
                                                                       0.5％（W/V） BPB 
                                                                       50％（V/V） 甘油 
                                                                       5％（W/V） β-巰基乙醇 
                                                        □配制量         5mL 
            □配置方法 1.量取下列試劑，置于10mL塑料離心管中。 
                                                                             1MTris-HCl 1.25mL
                                                                                SDS0.5g
                                                                                BPB 25mg
                                                                                甘油 2.5mL
                                     2.加入去離子水溶解后定容至5mL。
                                    3.小份（500μl/份）分裝后，于室溫保存。
                                     4.使用前將25μl的2-ME加到每小份中。
        5.加入2-ME的Loading Buffer可在室溫下保存一個月左右